高效液相色譜-串聯質譜法測定動物源性食品中8種甲狀腺拮抗劑殘留量

時間：2023-03-24 21:51:56來源：food欄目：食品快速檢測閱讀：

高效液相色譜-串聯質譜法測定動物源性食品中8種甲狀腺拮抗劑殘留量

[db:作者] / 2022-12-22 00:00

19.2.2.1 適用范圍

適用于牛肉、牛奶、豬肉、雞肉、雞肝、雞蛋、兔肉、兔肝中硫脲嘧啶、甲巰咪唑、甲基硫氧嘧啶、丙硫氧嘧啶、苯基硫氧嘧啶和2-巰基苯并咪唑殘留的液相色譜-串聯質譜測定。本方法的測定低限為：硫脲嘧啶、甲巰咪唑50μg/kg；甲基硫氧嘧啶、2-巰基苯并咪唑30μg/kg；丙硫氧嘧啶、苯基硫氧嘧啶5μg/kg。

19.2.2.2 方法原理

采用乙酸乙酯提取試樣中殘留的硫脲嘧啶、甲巰咪唑、甲基硫氧嘧啶、丙硫氧嘧啶、苯基硫氧嘧啶和2-巰基苯并咪唑，提取液經液液分配和HLB固相萃取柱凈化后，采用高效液相色譜-串聯質譜定性檢測，內標法定量。

19.2.2.3 試劑和材料

甲醇、甲酸、乙酸乙酯、正已烷、乙腈：高效液相色譜級；磷酸、巰基乙醇、二水乙二胺四乙酸二鈉：分析純；無水硫酸鈉：650℃灼燒4h，置于干燥器中備用。

0.1mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液：準確稱取37.2g二水乙二胺四乙酸二鈉，用水溶解并定容至1L；乙腈飽和的正己烷：量取正己烷80mL于100mL分液漏斗中，加入適量乙腈后，劇烈振搖，待分配平衡后，棄去乙腈層；0.1%甲酸水溶液：準確量取1mL甲酸，用水定容至1L；0.0025mol/L磷酸：準確量取0.2mL磷酸，用水定容至1L；溶解液：90mL 0.1%甲酸水溶液中加入10mL甲醇。

標準物質：硫脲嘧啶(2-thiouracil，TU)、甲巰咪唑(methimazole，TAP)、甲基硫氧嘧啶(methyl thiouracil，MTU)、丙硫氧嘧啶(propyl thiouracil，PTU)、苯基硫氧嘧啶(phenyl thiouracil，PhTU)、2-巰基苯并咪唑(2-mercaptobenzimidazole，MBI)，純度均≥99%。

內標物質：5，6-二甲基硫氧嘧啶(5，6-dimethyl-2-thiouracil，DMTU)，純度≥99%。

標準儲備溶液：準確稱取適量標準品(精確至0.0001g)，用甲醇溶解，配制成濃度為100μg/mL的標準儲備溶液，-18℃冷凍避光保存，有效期3個月。

混合中間標準溶液：準確移取各1mL標準儲備液于10mL容量瓶中，用甲醇定容至刻度，配制成濃度為10μg/mL的混合中間標準溶液，4℃冷藏避光保存，有效期1個月。

混合標準工作溶液：根據需要用甲醇把混合中間標準溶液稀釋成適合濃度的混合標準工作溶液，現用現配。

內標標準儲備液：準確稱取適量5，6-二甲基硫氧嘧啶(精確至0.0001g)，用甲醇溶解，配制成濃度為100μg/mL的內標標準儲備溶液，-18℃冷凍避光保存，有效期3個月。

內標標準工作溶液：準確移取0.1mL內標標準儲備液于10mL容量瓶中，用甲醇定容至刻度，配制成濃度為1μg/mL的內標標準工作溶液，4℃冷藏避光保存，有效期1個月。

氮氣：純度≥999%。氬氣：純度9999%。

HLB固相萃取柱：200mg，6mL，或相當者。

微孔濾膜：0.20um，有機相。

19.2.2.4 儀器和設備

液相色譜/串聯質譜儀：配備電噴霧離子源(ESI)；組織搗碎機；分析天平：感量0.0001g，0.01g；均質器：10000r/min；振蕩器；離心機：10000r/min；氮吹儀；旋渦混合器；超聲波水浴；減壓濃縮儀；梨形瓶：100mL；具塞塑料離心管：50mL；刻度試管：10mL；移液槍：5mL，1mL，200μL；分液漏斗：50mL。

19.2.2.5 樣品前處理

(1) 試樣制備

a.肌肉和內臟：從原始樣品取出有代表性樣品約500g，用組織搗碎機充分搗碎混勻，均分成兩份，分別裝入潔凈容器作為試樣，密封，并標明標記。將試樣置于-18℃冷凍避光保存。

b.奶：從原始樣品取出有代表性樣品約500g，充分攪拌混勻，均分成兩份，分別裝入潔凈容器作為試樣，密封，并標明標記。將試樣置于4℃冷藏避光保存。

c.蛋：從原始樣品取出有代表性樣品約500g，去殼后用組織搗碎機攪拌充分混勻，均分成兩份，分別裝入潔凈容器作為試樣，密封，并標明標記。將試樣置于4℃冷藏避光保存。

注：在制樣的操作過程中，應防止樣品污染或發生殘留物含量的變化。

(2)提取

稱取約5g試樣(精確至0.01g)于50mL塑料離心管中，依次加入150μL內標標準工作液、50uL巰基乙醇、30μL 0.1mol/L的乙二胺四乙酸二鈉溶液和適量無水硫酸鈉，吸去樣品中的水分，再加入20mL乙酸乙酯，用均質器以10000r/min均質1min后，振蕩提取20min，再以4000r/min離心5min，收集上清液于100mL梨形瓶中。殘渣用20mL乙酸乙酯再提取一次，合并上清液，在40℃水浴中減壓濃縮至近干。殘留物用10mL乙腈溶解，并轉移至50mL分液漏斗中，用30mL乙腈飽和后的正己烷分三次液液分配，去除油脂。收集乙腈層，在40℃水浴中減壓濃縮至近干，殘留物用10mL 0.0025mol/L磷酸溶解，超聲波水浴助溶5min后，待凈化。

(3)凈化

HLB固相萃取柱依次用5mL甲醇、5mL水預淋洗后，轉入10mL樣品提取液。先用5mL水進行淋洗，棄去；再用5mL甲醇進行洗脫，收集洗脫液于10mL刻度試管中。整個固相萃取凈化過程控制流速不超過2mL/min。洗脫液在40℃下用N2吹干。殘留物用1mL溶解液溶解，渦動1min后，過0.2um微孔濾膜，供儀器檢測。

(4) 混合基質標準溶液的制備

稱取5份約5g陰性試樣(精確至0.01g)于50mL塑料離心管中，按照標準曲線最終定容濃度分別加入混合中間標準溶液或混合標準工作溶液，再加入150uL內標標準工作液，余下操作按上述提取步驟操作。

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